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匿名使用者2024-02-05透明質酸中的蛋白質是指蛋白多醣中的蛋白質嗎，是否應該考慮從中去除醣胺聚醣並純化蛋白質，因為考馬斯亮藍需要與蛋白質結合才能顯色，樣品中的醣胺聚醣可能會有影響，或者樣品被汙染。
考馬斯亮藍溶液應該是酸性的，如果變成藍綠色，就不應該再使用。
此外，樣品中的tris、醋酸、2-巰基乙醇、EDTA等物質對實驗結果有少量的顏色干擾，做標準曲線時可用緩衝液代替蒸餾水，可以扣除干擾，但大量去汙劑如SDS對顏色影響太大，不易去除， 所以我們只能找到一種方法從樣品中去除洗滌劑
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匿名使用者2024-02-04你對標準蛋白質曲線做得很好嗎？ 我這兩周做過乙個蛋白質測定的實驗，測定吸收峰不規則的主要原因應該是試劑的問題，市面上很多蛋白和亮藍質量都差，亮藍的效果就算是進口也不好， （我買的第一款試劑，無法測量標準蛋白的吸光度）建議找個大一點的公司，換試劑，效果應該不錯，亮藍和蛋白的結合特異性還是很強的，這個方法不容置疑。
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匿名使用者2024-02-03含量（%）的計算公式如下：蛋白質濃度（g ml）取樣體積（ml）絕對分子系質量稀釋因子（ml）100%。 即：
含量 （%） 蛋白質濃度 （ g ml ） 取樣體積 （ml） 絕對分子量 稀釋因子（ml） 其中，絕對分子量是蛋白質的分子量，一般來說，1克蛋白質的絕對分子量是1,000,000微克，因此，蛋白質的絕對分子量計算為：蛋白質質量（克）1,000,000微克。 稀釋因子用於表示樣品的稀釋因子，一般來說，稀釋因子可以認為等於樣品體積。
因此，蛋白質含量（%）的計算公式為：蛋白質濃度（g ml）樣品體積（ml）蛋白質質量（g）1,000,000微克樣品體積（ml）100%。
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匿名使用者2024-02-02考馬斯亮藍法。
確定蛋白質濃度的原理。
考馬斯亮藍方法使用蛋白質染料來測定蛋白質濃度。
偶聯原理，一種用於定量測定痕量蛋白濃度的快速靈敏方法。 這種蛋白質測定被廣泛使用，因為它比其他幾種方法具有突出的優勢。 這種方法是目前最靈敏的蛋白質測定方法。
考馬斯G-250染料在酸性溶液中與蛋白質結合，使染料的最大吸收峰（Lmax）的位置從465nm變為595nm，溶液的顏色也從棕黑色變為藍色。 可以通過測量 595 nm 處光吸收的增加來確定與其結合的蛋白質量。 研究發現，染料主要與蛋白質中的鹼性氨基酸有關，尤其是精氨酸。
和芳香族氨基酸殘基。
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匿名使用者2024-02-01分子結構如右圖所示。
考馬斯亮藍色。
有兩種型別，G-250 和 R-250。
考馬斯亮藍G-250在有民突襲哥狀態下為紅色，最大吸光率為465nm; 當它與蛋白質結合並變成青色時，蛋白質-色素結合橋在 595 nm 的波長處具有最大的光吸收。 其光吸收值與蛋白質含量成正比。